#PAGE_PARAMS# #ADS_HEAD_SCRIPTS# #MICRODATA#

Příprava experimentálního modelu defektní anastomózy tlustého střeva prasete − souhrnné sdělení


Preparation of a pig experimental model of defective colon anastomosis − review

Anastomotic leak is a serious complication in colorectal surgery. The problem of intestinal anastomosis healing disorders is dealt with by a number of experimental studies, especially in applied research. The design of animal models is diverse and the results of individual studies are difficult to compare. This paper summarizes the main issues of planning animal models of intestinal anastomoses, which are discussed individually. The main part of the text is a description of the defective intestinal anastomosis model of the pig. The anastomosis is constructed in the model with a localized mucosal protrusion. The animals are monitored for 3 weeks postoperatively, the clinical condition and changes in vital values and laboratory parameters are monitored, and CT examinations are performed at defined points. At the end of the observation period, samples are taken, macroscopic findings in the abdominal cavity are evaluated, adhesions are scored, and signs of leakage or passage disorders are assessed. The preparations are evaluated histologically both by standard methods analyzing vascularity, inflammatory infiltration and the proportion of collagen, and by methods developed de novo for the needs of the experiment, such as the analysis of the integrity of the intestinal wall at the site of the mucosal protrusion. We value the experimental model for the possibility of a systematic and detailed analysis of the healing state of the anastomosis in combination with a detailed observation protocol, which produces clinically relevant results.

Keywords:

Animal models – colorectal surgery – anastomotic leakage – experiment – intestinal anastomosis


Autori: J. Rosendorf 1,2;  L. Červenková 1;  R. Pálek 1,2;  S. Šarčevič 1,2;  V. Třeška 2;  V. Liška 1,2
Pôsobisko autorov: Laboratoř nádorové léčby a regenerace tkáně, Biomedicínské centrum, Lékařská fakulta v Plzni, Univerzita Karlova 1;  Chirurgická klinika Lékařské fakulty v Plzni, Univerzita Karlova a Fakultní nemocnice Plzeň 2
Vyšlo v časopise: Rozhl. Chir., 2023, roč. 102, č. 3, s. 105-110.
Kategória: Souhrnné sdělení
doi: https://doi.org/10.33699/PIS.2023.102.3.105–110

Súhrn

Anastomotický leak je v kolorektální chirurgii závažnou komplikací. Problematikou poruch hojení střevní anastomózy se zabývá řada experimentálních prací zejména ve smyslu aplikovaného výzkumu. Design zvířecích modelů je přitom různorodý a výsledky jednotlivých prací jsou těžko porovnatelné. Tato práce pojednává souhrnně o hlavních bodech problematiky plánování zvířecích modelů střevních anastomóz, které jsou jednotlivě rozebrány. Hlavní částí textu je popis modelu defektní střevní anastomózy prasete. Anastomóza je v modelu konstruována s lokalizovanou protruzí sliznice. Zvířata jsou pooperačně sledována 3 týdny, monitorovány jsou jak klinický stav, tak změny vitálních hodnot, laboratorních parametrů, je prováděno v definovaných bodech CT vyšetření. Na konci observačního období jsou odebrány vzorky, hodnocen makroskopický nález v dutině břišní, skórování adhezí, známky leaku či poruch pasáže. Histologicky jsou preparáty hodnoceny jak standardními metodami analyzujícími vaskularitu, zánětlivou infiltraci a podíl kolagenu, tak metodami vyvinutými de novo pro potřeby experimentu, jako je analýza integrity střevní stěny v místě slizniční protruze. Experimentálního modelu si ceníme pro možnost systematické a podrobné analýzy stavu zhojení anastomózy v kombinaci s podrobným observačním protokolem, jež vytvářejí klinicky relevantní výsledky.

Klíčová slova:

zvířecí modely – anastomotický leak – kolorektální chirurgie – experiment – střevní anastomóza

ÚVOD

Problematika poruch hojení a s nimi spojených pooperačních komplikací je stále aktuální otázkou chirurgie zažívacího traktu. Jedná se o širokou škálu chirurgických zákroků a jejich specifických komplikací [1]. Konstrukce anastomózy je jedním ze základních kamenů viscerální chirurgie a jako taková jistě nebude v blízké budoucnosti nahrazena alternativními metodami. Tento výkon bohužel provází v závislosti na řadě faktorů několik typů komplikací. Jedním z nejobávanějších je vznik anastomotického leaku, pro který je typický vznik v časném pooperačním období a který je často spojen s enormním dopadem na průběh stonání a často i výslednou pooperační kvalitu života [2]. V poněkud širším časovém horizontu jsou pacienti ohroženi vznikem anastomotických striktur, ale i ty vedou k dlouhodobým potížím, nutnosti dalších a dalších chirurgických či endoskopických zákroků spojených s dlouhodobou traumatizací pacienta s jistým snížením jeho kvality života [3].

Etiologie vzniku těchto komplikací je doposud probádána pouze povrchně. Pokud se jedná zejména o anastomotický leak, známá je pouze řada kontribuujících faktorů, jejichž souhra vyústí v manifestaci poruchy hojení [4]. Vzhledem k palčivé problematice kolorektálního leaku je v experimentálních podmínkách testována řada produktů a léčiv, případně procedur majících za cíl snížení její četnosti, až eliminaci jejího výskytu. Většina prací je vedena pouze způsobem aplikovaného výzkumu a základní otázky fyziologie a mechaniky procesu hojení trávicí trubice tak zůstávají nezodpovězeny. Design zvířecích modelů je různorodý, tvořený vždy na míru potřebám daného výzkumu, což je správně, nicméně výsledky jednotlivých prací nelze vždy díky rozdílné metodice snadno porovnávat mezi sebou. Jelikož je etiologie vzniku anastomotické dehiscence multifaktoriální, je třeba, aby se jednotlivé studie zabývaly buď specifickou léčbou ve výzkumu aplikovaném, či partikulárními patofyziologickými mechanismy jejího vzniku v případě výzkumu základního. Kvalitní střevní modely jsou tedy velice důležité a jejich design musí být pečlivě navržen na míru potřebám projektu.

Protože přirozený výskyt komplikací anastomóz na zažívacím traktu u zdravých experimentálních zvířat je velmi nízký, je třeba využít vhodný model anastomózy tak, aby výtěžnost výsledků a jejich klinická relevance byly co největší i při zachování nízkých počtů operovaných zvířat a dalších nepodkročitelných zásad 3R [5].

Záměrem následujícího textu je poskytnout přehled o možnostech a limitacích experimentálních modelů anastomóz zažívacího traktu, současně je prezentovat na konkrétním příkladu experimentálního modelu defektní anastomózy tračníku prasete, vytvořeného pro potřeby výzkumu naší laboratoře [6−8] a několika vybraných studiích ze světové literatury.

• Experimentální zvíře

Existuje řada zavedených experimentálních modelů anastomóz na různých etážích zažívacího traktu. Jako první je třeba při plánování projektu zvolit experimentální zvíře. S přihlédnutím k anatomii zažívacího traktu a jeho fyziologii jsou vhodná modelová zvířata, která se blíží nejvíce lidskému tělu. Použití primátů je v současné době z jasných etických důvodů prakticky nemožné. Nejčastějšími modelovými zvířaty jsou v současnosti prase, potkan, myš, v daleko menší míře potom ovce, pes [9]. Hlodavci umožňují snadnou manipulaci, relativně nižší náklady na operační i perioperační péči, zároveň i možnost provedení pokusu na větším počtu jedinců v krátkém čase. U větších zvířat je však výhoda rozměrové podobnosti s lidským traktem, která umožní vytvořit i mechanicky věrohodný model, a tedy klinicky relevantnější. Kromě mechanického faktoru může být limitací u malých modelů nemožnost nebo vysoká obtížnost provádění některých vyšetřovacích a laboratorních metod (pravidelné krevní odběry, endoskopie), nemožnost provedení staplerové anastomózy, pokud je to potřeba. Uvážíme-li vliv stravovacích návyků, mikrobiomu, mechaniky vyprazdňování atp., prase je velmi relevantním modelovým zvířetem pro ověřování hypotéz, jak bylo prokázáno v některých studiích [10,11].

• Úroveň anastomózy, její konfigurace, technika sutury

Konkrétní typ výkonu závisí přímo na zamýšlené studované problematice. Z toho pohledu je třeba věnovat pozornost udržení jednoduchosti experimentu. Náročné chirurgické výkony se složitou rekonstrukcí zažívacího traktu a složité experimentální podmínky neumožňují jednoduchou interpretaci výsledků, odhalení jasných spojitostí mezi příčinou a následkem a obecně mohou být příčinou nutnosti použití větších souborů zvířat pro dosažení dobře čitelných výsledků a statisticky signifikantních rozdílů mezi skupinami. Je také důležité v neposlední řadě brát v potaz anatomické rozdíly daného druhu a jeho limitace, např. několikakomorový žaludek u přežvýkavců, spirální tračník prasete atp., které neumožňují věrně provádět některé chirurgické výkony a mohou mít i vliv na mechaniku zátěže spojky.

Konfigurace anastomózy a technika sutury by měly respektovat studovanou problematiku. Tato otázka je jasná, pokud je technika konstrukce samotnou zkoumanou metodou. Pokud ne, mělo by být zvoleno řešení, které bude co možná v nejmenší míře interferovat s vyhodnocením výsledků.

• Modely komplikací a poruch hojení

Pro sledování efektu léčebných prostředků je vhodné provádět experiment na modelu poruchy hojení. Většina známých modelů počítá se simulací některého známého rizikového faktoru anastomotického leaku nebo s technickou konstrukční chybou (konstrukční chyba, riziková anastomóza, ischemie, ozáření, chemoterapie, imunosuprese, infekce) [12−14]. V mezích 3R je však obtížné vytvořit statisticky hodnotitelný a zároveň dostatečně robustní soubor zvířat s klinicky významným a relevantním anastomotickým leakem. Simulace vysoké míry rizika leaku v desítkách procent umožňuje sice vznik souborů s dostatečnými statistickými rozdíly výsledků, však samotný podklad vzniku leaku již přestává být v jednotlivých modelech odpovídající reálnému podkladu vzniku leaku v klinickém prostředí. Je-li vznik leaku hlavním hodnoceným parametrem, je pak výstup experimentu binární hodnotou (např. dvě zvířata měla leak a dvě neměla), což pro důvěryhodnost výzkumu vyžaduje jistě větší soubory zvířat. Naproti tomu hodnocení kvality a dynamiky hojení například histologickými metodami, biochemicky, imunohistochemicky, v kombinaci s dalšími technikami, jako jsou průběžná zobrazovací vyšetření, mechanické testy atp., nabízí jako výsledek místo binární odpovědi škály, které nejen umožní redukci velikosti souboru, ale přinášejí i velké množství dalších dat k posouzení [6−8,15,16].

• Hodnoticí parametry

Základní hodnoticí parametry jsou dány průběhem stonání experimentálních zvířat. Jednak jsou to změny klinického nálezu (aktivita, vitální hodnoty, hmotnost, teplota atp.), jednak nálezy paraklinických vyšetření (zobrazovací vyšetření, laboratorní vyšetření) [8,17,18]. Kromě klinických známek manifestace anastomotického leaku, které jsou do jisté míry nespecifické, je pak důležitý abdominální nález a lokální změny v oblasti anastomózy. V experimentálních modelech jsou standardně hodnoceny peritoneální změny včetně srůstů, přítomnost a charakter peritoneálního výpotku, změny průměru střevní trubice, dále nález v oblasti samotné anastomózy. Zde je třeba se makroskopicky vyjádřit k přítomnosti defektů, stenóz, adhezí, ev. abscesů a jiných patologických lokálních změn. V některých publikacích je dokonce lokální nález hodnocen v průběhu experimentu endoskopicky [17]. Mezi následující hodnocené parametry bývají nejčastěji voleny mechanické zkoušky (trhová zkouška, tlaková zkouška) [19−21] a histologická hodnocení. Pro některá komplexní histologická měření však může být předchozí aplikace mechanických zkoušek limitující, a je tedy otázkou, který ze zmíněných parametrů je pro danou studii cennější. Mezi základní histologická hodnocení bývají zahrnuta měření lokálních podílů kolagenu, úroveň zánětlivé infiltrace tkáně, vaskularizace, případně další parametry specifické pro danou studii.

• Vybrané modely z literatury

Následují příklady několika vybraných typů modelů popisující jejich základní aspekty, přednosti a možnosti aplikace.

• Model technicky insuficientní sutury anastomózy tračníku myši

Pommergaard a kol. [22] vybrali pro své studie (jako tým, který se dlouhodobě problematice věnuje) model využívající insuficientní suturu end-to-end anastomózy tračníku myši. Konstrukce spojky byla prováděna jednotlivými stehy a při snížení hustoty sutury na 4 jednotlivé stehy na spojku došlo v poměrně velké experimentální skupině k rozvoji klinicky manifestovaného leaku s fekální peritonitidou u 40 % zvířat [22]. Model najde dobré uplatnění při aplikacích fortifikujících materiálů, jako jsou tkáňová lepidla a patche, kde může věrně hodnotit mechanickou podporu materiálu a vliv jeho aplikace na rozvoj leaku. Nevýhodou zůstává nutné užití většího počtu zvířat, diametrálně odlišná mechanika od humánní anatomie a zároveň vysoká závažnost experimentu, vezmeme-li v potaz, že 40 % zvířat musí být časně pooperačně usmrceno pro závažnou komplikaci. Ve studii bylo operováno 110 zvířat [22].

• Model technicky insuficientní anastomózy prasete

Kolektiv českých autorů (Kalvach, et al.) připravil pro potřeby hodnocení efektu endoskopických intervencí pro insuficienci kolorektální anastomózy jednoduchý model na praseti. Ve studii o 42 zvířatech byla provedena staplerová anastomóza na tračníku s defektem vytvořeným znehodnocenou nábojnicí stapleru. U zvířat byl druhý pooperační den proveden transanální výkon ve smyslu sutury defektu různými technikami. Kontrolní skupina byla ponechána bez dalšího zákroku, zde se rozvinuly klinické známky anastomotické komplikace u 12 ze 14 zvířat. Model tedy vytvořil leak u většiny zvířat a hodnotíme jej jako vhodný pro posouzení možností nových transanálních technik léčby leaku [23]. Jedná se o insuficienci zdravé tkáně, která je čistě mechanická a perioperačně vytvořená. Tato je v klinickém prostředí preventována perioperační vzduchovou zkouškou. Endoskopické metody jsou tak v praxi aplikovány u dehiscence, která má podklad spíše již v poruše hojení, a tak výsledky a samotné provedení těchto zákroků mají jiná úskalí.

• Model insuficience anastomózy tračníku potkana indukovaný předoperační radioterapií

Turecká výzkumná skupina pod vedením Tasdovena [24] se ve své práci rozhodla využít jiný rizikový faktor dehiscence anastomózy, a totiž předoperační radioterapii. Vzhledem k malým rozměrům modelu (potkan) byla aplikována celotělová radioterapie v dávce 6 Gy. Následně byla konstruována anastomóza na tračníku bez technických chyb. V modelu nebyl cílem vznik manifestace anastomotického leaku, ale pečlivá histologická, biochemická a mechanická analýza hojení. Pro sledování dynamiky jednotlivých aspektů hojení spojky bylo využito několik časových intervalů přežití. V modelu se nevyskytovaly závažné komplikace nutící k předčasnému ukončení života zvířat [24]. Výhodou tohoto modelu je dle našeho názoru radioterapie jako klinicky relevantní podklad poruchy hojení. V malém modelu však nebylo možné simulovat podmínky lokálně ozářeného pacienta. Široká paleta hodnocení včetně dynamiky změn pak přináší vysokou výtěžnost experimentu a využitelnost při aplikaci nových technik sutury či podpůrných materiálů a hodnocení jejich vlivu na podporu hojení rizikové anastomózy. To vše je však za cenu vyšších počtů zvířat vzhledem k potřebě mnoha skupin s různým časem odběru vzorků a různým metodám zpracování (buď histologické, či mechanické testy). Ve studii bylo použito 48 zvířat [24].

• Model ischemizované anastomózy tračníku potkana

Limitovaná ischemie je další možností konstrukce rizikové anastomózy. Míra ischemizace je přitom kritická pro manifestaci leaku u dostatečného množství zvířat. V modelu Fontoura-Andrade [25] byl využit opět jako modelový organismus potkan, u něhož byla konstruována anastomóza na tračníku. Střevo bylo v rozsahu 2 cm orálně a aborálně od spojky zbaveno cévního zásobení. K rozvoji anastomotického leaku došlo i při takovémto postižení u 25 % zvířat. Hodnocení pak probíhala zvykle histologicky a mechanicky jako u výše zmíněných prací v různých časových bodech [25]. Jako výhodu opět hodnotíme klinicky relevantní podklad pro rozvoj leaku s dobře nastavenou mírou jeho výskytu, tím pádem možnost sledování ovlivnění hojení jak celkově podávanou, tak lokální léčbou.

• Model histologicky defektní anastomózy colon descendens prasete Lékařské fakulty v Plzni

Pro účely výzkumu na Lékařské fakultě v Plzni byl vyvinut model na praseti domácím. Vysoká schopnost zdravých zvířat zahojit nekomplikovaně operační rány včetně anastomózy na zažívacím traktu bez projevu komplikací vedla k tvorbě modelu zaměřeného na rozdíly v kvalitě hojení zejména histologickými metodami. Proto byl experiment navržen tak, aby jak konfigurace anastomózy, tak použité materiály a doba sledování co nejlépe vyhovovaly níže popisovaným měřením. Jako konkrétní druh bylo použito přeštické černostrakaté prase. Po konzultaci statistika vzhledem ke škálám předpokládaných výstupních výsledků byla zvolena v našich pracích využívajících tento model velikost jednotlivých skupin o 8 zvířatech [6−8].

V den chirurgické operace nebyla zvířata krmena, střevní příprava nebyla aplikována. V celkové anestezii bylo provedeno nejprve kontrastní CT vyšetření břicha, hrudníku. Kromě srovnání s pooperačními vyšetřeními CT umožňuje i vyřazení nemocných zvířat ještě před experimentem. Následně byl za antibiotické profylaxe (amoxicilin klavikulonát) implantován centrální žilní port katétr zavedený do jugulární žíly pro snadnou manipulaci se zvířetem během sledování, eliminaci stresu při pooperačních vyšetřeních. Následně byla zvířatům provedena incize v levém kaudálním kvadrantu břišní stěny, z níž byl dokončen přístup do dutiny břišní formou pararektálního řezu (Obr. 1, Obr. 2, Obr. 3). Incizí byl luxován sestupný tračník prasete, byla provedena jeho transsekce ve vzdálenosti 20 cm od anu [6−8].

Obr. 1. Zvíře v celkové anestezii, pozice řezu
Fig. 1: Animal in general anaesthesia; the incision location
Zvíře v celkové anestezii, pozice řezu<br>
Fig. 1: Animal in general anaesthesia; the incision location

Obr. 2. Incize, odhalený musculus rectus sinister
Fig. 2: The incision; exposed left rectus muscle
Incize, odhalený musculus rectus sinister<br>
Fig. 2: The incision; exposed left rectus muscle

Obr. 3. Incize, odtažený musculus rectus sinister
Fig. 3: The incision; retracted left rectus muscle
Incize, odtažený musculus rectus sinister<br>
Fig. 3: The incision; retracted left rectus muscle

Poté byla zkonstruována end-to-end anastomóza pomocí standardního seromuskulárního pokračujícího stehu s tvorbou technické chyby v antimezokolické lokalizaci. V rozsahu dvou stehů byla sutura provedena nikoliv seromuskulárně, ale transmurálně o délce kroku 0,5 cm. Tento krok měl za následek vznik sice stále těsnící spojky, ale vytvořil v daném místě výraznou prominenci sliznice u obou konců střevní trubice (Obr. 4), a tudíž prostor pro suboptimální hojení [6−8].

Obr. 4. Již zkonstruovaná anastomóza s defektem antimezokolicky a prominující sliznicí
Fig. 4: Constructed anastomosis with a defect at the antimesocolic side and with protruding mucous membrane
Již zkonstruovaná anastomóza s defektem antimezokolicky
a prominující sliznicí<br>
Fig. 4: Constructed anastomosis with a defect at the antimesocolic
side and with protruding mucous membrane

Zvířata byla následně sledována klinicky, laboratorně a pravidelnými CT kontrolami [6−8]. V provedených experimentech byla nulová pooperační letalita, morbidita byla omezena na nečetné komplikace stupňů II−III dle Clavien-Dindo klasifikace. Při odběru vzorků po 21 dnech byly v břišní dutině hodnoceny makroskopické známky anastomotického leaku. Současně byl zjištěn rozsah a umístění peritoneálních adhezí kvantitativně i kvalitativně, k čemuž byl navržen systém hodnocení Perianastomotic Adhesion Amount Score (PAAS) [6−8]. Střevní vzorky byly standardně histologicky zpracovány. Pro hodnocení integrity střevní stěny v místě anastomotického defektu byl navržen semikvantitativní skórovací systém (skóre integrity anastomózy, Intestinal Wall Integrity Score − IWIS) [7]. Další histologické parametry hojení byly hodnoceny stereologickými metodami [6−8].

Model poskytl u všech operovaných zvířat v místě defektu histologicky potvrzenou sníženou integritu střevní stěny oproti zbytku sutury, a je tak z našeho pohledu vhodný zejména pro aplikovaný výzkum lokální materiálové podpory hojení. Nedokonalá adaptace vrstev střevní stěny je tak reálným a zde zdokumentovaným podkladem poruchy hojení. Rozvoj samotného leaku však v modelu klinicky pozorován není, což může být považováno za jeho slabinu v závislosti na jeho využití.

Tab. 1. Možné konfigurace modelů
Tab. 1: Possible configurations of the models
Možné konfigurace modelů<br>
Tab. 1: Possible configurations of the models

ZÁVĚR

Zvířecí model je nutno připravit na míru zkoumané problematice a současným vysokým etickým nárokům pro práci se zvířaty. Zároveň je nutno dodržet vysokou úroveň experimentální práce s důrazem na čitelnost výsledků a jejich jednoznačnou interpretovatelnost s využitím jak metod speciálních, tak metod, které jsou pro danou problematiku v současné literatuře standardem. Všechny citované práce tyto požadavky splňují a jsou důkazem, že každá zkoumaná problematika potřebuje odlišný pohled a vlastní strategii pro design modelu.

V současné době jsou nutné zejména nové modely pro potřeby základního výzkumu patofyziologie hojení na zažívacím traktu, které by přinesly nové poznatky z této problematiky. Bez nich bude cílená prevence a léčba anastomotických komplikací vždy obtížná a nespolehlivá.

Poděkování

Projekt je podpořen grantem Agentury pro zdravotnický výzkum Ministerstva zdravotnictví České republiky č. NU20J-08-00009, Prevence střevního anastomotického leaku a pooperačních adhezí pomocí nanovlákenných biodegradabilních materiálů.

Konflikt zájmů

Autoři článku prohlašují, že nejsou v souvislosti se vznikem tohoto článku ve střetu zájmů a že tento článek nebyl publikován v žádném jiném časopise, s výjimkou kongresových abstrakt a doporučených postupů.

MUDr. Jáchym Rosendorf, Ph.D.

Chirurgická klinika FN Plzeň Lochotín

Alej Svobody 80

304 60 Plzeň

e-mail: jachymrosendorf@gmail.com


Zdroje

1. Chadi SA, Fingerhut A, Berho M, et al. Emerging trends in the etiology, prevention, and treatment of gastrointestinal anastomotic leakage. J Gastrointest Surg. 2016 Dec;20(12):2035−2051. doi:10.1007/s11605-016-3255-3.

2. Foppa C, Ng SC, Montorsi M, et al. Anastomotic leak in colorectal cancer patients: New insights and perspectives. Eur J Surg Oncol. 2020 Jun;46(6):943−954. doi:10.1016/j.ejso.2020.02.027.

3. Bhama AR, Maykel JA. Diagnosis and management of chronic anastomotic leak. Clin Colon Rectal Surg. 2021 Nov 23;34(6):406−411. doi:10. 1055/s-0041- 1732322.

4. Kelm M, Anger F. Mucosa and microbiota − the role of intrinsic parameters on intestinal wound healing. Front Surg. 2022 Jul 22;9:905049. doi:10.3389/ fsurg.2022.905049.

5. Gruber FP, Hartung T. Alternatives to animal experimentation in basic research. ALTEX 2004;21 Suppl 1:3−31.

6. Rosendorf J, Horakova J, Klicova M, et al. Experimental fortification of intestinal anastomoses with nanofibrous materials in a large animal model. Sci Rep. 2020 Jan 24;10(1):1134. doi:10.1038/s41598-020- 58113-4.

7. Rosendorf J, Klicova M, Cervenkova L, et al. Double-layered nanofibrous patch for prevention of anastomotic leakage and peritoneal adhesions, experimental study. In Vivo 2021 Mar−Apr;35(2):731−741. doi:10.21873/invivo. 12314.

8. Rosendorf J, Klicova M, Cervenkova L, et al. Reinforcement of colonic anastomosis with improved ultrafine nanofibrous patch: Experiment on pig. Biomedicines 2021 Jan 21;9(2):102. doi:10.3390/biomedicines9020102.

9. Burke JR, Helliwell J, Wong J, et al. The use of mesenchymal stem cells in animal models for gastrointestinal anastomotic leak: A systematic review. Colorectal Dis. 2021 Dec;23(12):3123−3140. doi:10.1111/codi.15864.

10. Wang M, Donovan SM. Human microbiota- associated swine: current progress and future opportunities. ILAR J. 2015;56(1):63−73. doi:10.1093/ilar/ ilv006.

11. Gonzalez LM, Moeser AJ, Blikslager AT. Porcine models of digestive disease: the future of large animal translational research. Transl Res. 2015 Jul;166(1):12−27. doi:10.1016/j.trsl.2015.01.004.

12. Seifert WF, Biert J, Wobbes T, et al. Late effects of intraoperative radiation therapy in anastomotic rat colon. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 1998 Oct 1;42(3):623−629. doi:10.1016/s0360-3016(98)00259-4.

13. Jahnson S, Holtz A, Gerdin B. Anastomotic blood-flow reduction in rat small intestine with chronic radiation damage. Digestion 1998;59(2):134−141. doi:10.1159/000007478.

14. Van de Putte D, Demarquay C, Van Daele E, et al. Adipose-derived mesenchymal stromal cells improve the healing of colonic anastomoses following high dose of irradiation through anti-inflammatory and angiogenic processes. Cell Transplant. 2017 Dec;26(12):1919−1930. doi:10.1177/0963689717721515.

15. Miltschitzky JRE, Clees Z, Weber MC, et al. Intestinal anastomotic healing models during experimental colitis. Int J Colorectal Dis. 2021 Oct;36(10):2247−2259. doi:10.1007/s00384-021-04014-5.

16. Bachmann R, Van Hul M, Leonard D, et al. The colonoscopic leakage model: a new model to study the intestinal wound healing at molecular level. Gut 2020 Dec;69(12):2071−2073. doi:10.1136/gutjnl- 2020-321234.

17. Neumann PA, Twardy V, Becker F, et al. Assessment of MMP-2/-9 expression by fluorescence endoscopy for evaluation of anastomotic healing in a murine model of anastomotic leakage. PLoS One. 2018 Mar 22;13(3):e0194249. doi:10.1371/journal. pone.0194249.

18. Wenger FA, Szucsik E, Hoinoiu BF, et al. A new anastomotic leakage model in circular double stapled colorectal anastomosis after low anterior rectum resection in pigs. J Invest Surg. 2013 Dec;26(6):364−372. doi:10.3109/089419 39.2013.818174.

19. Fan C, Ma J, Zhang HK, et al. Sutureless intestinal anastomosis with a novel device of magnetic compression anastomosis. Chin Med Sci J. 2011 Sep;26(3):182−189. doi:10.1016/s1001-9294(11)60046-1.

20. Ikeuchi D, Onodera H, Aung T, et al. Correlation of tensile strength with bursting pressure in the evaluation of intestinal anastomosis. Dig Surg. 1999;16(6): 478−485. doi:10.1159/000018773.

21. Ma F, Ma J, Ma S, et al. A novel magnetic compression technique for small intestinal end-to-side anastomosis in rats. J Pediatr Surg. 2019 Apr;54(4):744−749. doi:10.1016/j.jpedsurg.2018.07.011.

22. Pommergaard HC, Achiam MP, Rosenberg J. Colon anastomotic leakage: improving the mouse model. Surg Today 2014 May;44(5):933−939. doi:10.1007/ s00595-013-0632-3. Epub 2013 Jun 9. PMID: 23748879.

23. Kalvach J, Ryska O, Martinek J, et al. Randomized experimental study of two novel techniques for transanal repair of dehiscent low rectal anastomosis. Surg Endosc. 2022 Jun;36(6):4050−4056. doi:10.1007/s00464-021-08726-1.

24. Taşdöven İ, Emre AU, Gültekin FA, et al. Effects of ozone preconditioning on recovery of rat colon anastomosis after preoperative radiotherapy. Adv Clin Exp Med. 2019 Dec;28(12):1683−1689. doi:10.17219/acem/110329.

25. Fontoura-Andrade JL, Pinto LM, Carneiro FP, Sousa JB. Effect of preconditioning and postoperative hyperbaric oxygen therapy on colonic anastomosis healing with and without ischemia in rats. Acta Cir Bras. 2020 Jun 22;35(5):e202000503. doi:10.1590/s0102- 865020200050000003. PMID: 32578671; PMCID: PMC7310584.

Štítky
Chirurgia všeobecná Ortopédia Urgentná medicína

Článok vyšiel v časopise

Rozhledy v chirurgii

Číslo 3

2023 Číslo 3
Najčítanejšie tento týždeň
Najčítanejšie v tomto čísle
Kurzy

Zvýšte si kvalifikáciu online z pohodlia domova

Aktuální možnosti diagnostiky a léčby litiáz
nový kurz
Autori: MUDr. Tomáš Ürge, PhD.

Všetky kurzy
Prihlásenie
Zabudnuté heslo

Zadajte e-mailovú adresu, s ktorou ste vytvárali účet. Budú Vám na ňu zasielané informácie k nastaveniu nového hesla.

Prihlásenie

Nemáte účet?  Registrujte sa

#ADS_BOTTOM_SCRIPTS#