Nefroprotektivní účinek N-acetylglukosaminu u potkanů s akutním poškozením ledvin
Nefroprotektivní účinek N-acetylglukosaminu u potkanů s akutním poškozením ledvin
Článek prezentuje výsledky studie nefroprotektivního účinku N-acetylglukosaminu (NAG) na vývoj experimentálního akutního poškození ledvin (APL). Studie byla provedena na modelu akutní glycerolové nefrózy u potkanů. NAG byl studován v dávce 50 mg/kg při denním parenterálním podání během jednoho týdne ve srovnání s kvercetinem, který byl podáván intraperitoneálně v dávce 34 mg/kg. Účinnost léčiv byla hodnocena podle funkčního stavu zvířat, renální vylučovací funkce a ukazatelů metabolismu dusíku. Účinek NAG na potkany s APL způsobil snížení míry úmrtnosti, zvýšení diurézy, snížení proteinurie, zvýšení vylučování kreatininu a močoviny, což ukazuje na normalizaci vylučovací funkce ledvin a metabolismu dusíku. Zároveň NAG statisticky významně převýšil účinek kvercetinu ve většině ukazatelů, a tedy i úroveň účinnosti. NAG je tedy účinným lékem pro léčbu APL, který může být použit při parenterálním podání.
Klíčová slova:
N-acetylglukosamin – nefroprotektivní účinek – experimentální akutní poškození ledvin
Autoři:
Sergii K. Shebeko; Igor A. Zupanets; Olha O. Tarasenko
Vyšlo v časopise:
Čes. slov. Farm., 2019; 68, 173-179
Kategorie:
Original Article
Souhrn
Článek prezentuje výsledky studie nefroprotektivního účinku N-acetylglukosaminu (NAG) na vývoj experimentálního akutního poškození ledvin (APL). Studie byla provedena na modelu akutní glycerolové nefrózy u potkanů. NAG byl studován v dávce 50 mg/kg při denním parenterálním podání během jednoho týdne ve srovnání s kvercetinem, který byl podáván intraperitoneálně v dávce 34 mg/kg. Účinnost léčiv byla hodnocena podle funkčního stavu zvířat, renální vylučovací funkce a ukazatelů metabolismu dusíku. Účinek NAG na potkany s APL způsobil snížení míry úmrtnosti, zvýšení diurézy, snížení proteinurie, zvýšení vylučování kreatininu a močoviny, což ukazuje na normalizaci vylučovací funkce ledvin a metabolismu dusíku. Zároveň NAG statisticky významně převýšil účinek kvercetinu ve většině ukazatelů, a tedy i úroveň účinnosti. NAG je tedy účinným lékem pro léčbu APL, který může být použit při parenterálním podání.
Klíčová slova:
N-acetylglukosamin – nefroprotektivní účinek – experimentální akutní poškození ledvin
Zdroje
1. Gilbert S. J., Weiner D. E., Bomback A. S., Perazella M. A., Tonelli M. National Kidney Foundation Primer on Kidney Diseases, 7th ed. Philadelphia: Elsevier 2018.
2. Lerma E., Sparks M., Topf J. Nephrology secrets, 4th еd. Philadelphia: Elsevier 2019.
3. Feehally J., Floege J., Johnson R. J., Tonelli M. Comprehensive clinical nephrology, 6th ed. Philadelphia: Elsevier 2019.
4. Baynes J. W., Dominiczar M. H. Medical biochemistry, 5th ed. Philadelphia: Elsevier 2019.
5. Lieberman M., Peet A. Marks’ basic medical biochemistry: A clinical approach, 5th еd. Philadelphia: Wolters Kluwer 2018.
6. Morita H., Yoshimura A., Kimata K. The role of heparan sulfate in the glomerular basement membrane. Kidney International 2008; 73, 247–248.
7. Shebeko S. K., Zupanets I. A. Study of the pharmacological properties of some glucosamine derivatives under conditions of development of experimental autoimmune glomerulonephritis. Klìnìčna farmacìâ 2006; 10(2), 31–35 (in Ukrainian).
8. Zupanets I. A., Shebeko S. K. The influence of experimental therapy on the dynamics of endogenous glucosamine content in laboratory animals with nephropathy. Eksp. Klin. Farmakol. 2006; 69(6), 40–42 (in Russian).
9. Chen J. K., Shen C. R., Liu C. L. N-Acetylglucosamine: production and applications. Mar. Drugs 2010; 8, 2493–2516.
10. Du Souich P. Absorption, distribution and mechanism of action of SYSADOAS. Pharmacology & Therapeutics 2014; 142(3), 362–374.
11. Shebeko S. K., Zupanets I. A., Popov O. S. Tarasenko O. O., Shalamay A. S. Effects of quercetin and its combinations on health. In: Watson R. R., Preedy V. R., Sherma Z. (eds.) Polyphenols: mechanisms of action in human health and disease, 2nd ed. London: Academic Press 2018; 373–394.
12. Guide for the care and use of laboratory animals, 8th ed. Washington: National Academies Press 2011.
13. Sharp P., Villano J. S. The laboratory rat, 2nd ed. Boca Raton: CRC Press 2013.
14. Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. Official Journal of the European Union 2010; L276, 33–79.
15. Bao Y. W., Yuan Y., Chen J. H., Lin W. Q. Kidney disease models: tools to identify mechanisms and potential therapeutic targets. Zoological Research 2018; 39(2), 72–86.
16. Flecknell P. A. Laboratory animal anesthesia, 4th ed. Oxford: Academic Press 2015.
17. Hart S. A., Hropot M., Greger R., Gögelein H., Bleich M. Activity on urinary tract. In: Vogel H. G. (ed.) Drug discovery and evaluation: Pharmacological Assays, 3rd ed. Berlin: Springer-Verlag 2008; 457–510.
18. Koeppen B. M., Stanton B. A. Renal physiology, 6th ed. Philadelphia: Elsevier 2019.
19. Speeckaert M., Delanghe J. Assessment of renal function. In: Turner N., Lameire N., Goldsmith D. J., Wineals C. G., Himmelfarb J., Remuzzi G. (eds.) Oxford textbook of clinical nephrology, 4th ed. Oxford: University Press 2016; 44–61.
20. Islam M. A., Al-Shiha A. Foundations of biostatistics. Singapore: Springer 2018.
21. Dudley W. N., Wickham R., Coombs N. An introduction to survival statistics: Kaplan-Meier analysis. J. Adv. Pract. Oncol. 2016; 7(1): 91–100.
22. Park J., Lee S. Y., Ooshima A., Yang K. M., Kang J. M., Kim Y. W., Kim S. J. Glucosamine hydrochloride exerts a protective effect against unilateral ureteral obstruction-induced renal fibrosis by attenuating TGF-β signaling. J. Mol. Med. 2013; 91(11), 1273–1284.
23. Hu J., Chen R., Jia P., Fang Y., Liu T., Song N., Xu X., Ji J., Ding X. Augmented O-GlcNAc signaling via glucosamine attenuates oxidative stress and apoptosis following contrast-induced acute kidney injury in rats. Free Radic. Biol. Med. 2017; 103, 121–132.
24. Wang X., Xiong M., Zeng Y., Sun X., Gong T., Zhang Z. Mechanistic studies of a novel mycophenolic acid-glucosamine conjugate that attenuates renal ischemia/reperfusion injury in rat. Mol. Pharm. 2014; 11, 3503–3514.
25. Fu Y., Lin Q., Gong T., Sun X., Zhang Z. R. Renal-targeting triptolide-glucosamine conjugate exhibits lower toxicity and superior efficacy in attenuation of ischemia/reperfusion renal injury in rats. Acta Pharmacol. Sin. 2016; 37, 1467–1480.
26. Yang H., Song Y., Liang Y. N., Li R. Quercetin treatment improves renal function and protects the kidney in a rat model of adenine-induced chronic kidney disease. Med. Sci. Monit. 2018; 24, 4760–4766.
27. Layal K., Perdhana I. S., Louisa M., Estuningtyas A., Soetikno V. The effects of quercetin on oxidative stress and fibrosis markers in chronic kidney disease rat model. Med. J. Indones. 2017; 26, 169–177.
28. Vargas F., Romecín P., García-Guillén A. I., Wangesteen R., Vargas-Tendero P., Paredes M. D., Atucha N. M., García-Estañ J. Flavonoids in kidney health and disease. Front. Physiol. 2018; 9, Article 394. https://www.frontiersin.org
29. Anand David A.V., Arulmoli R., Parasuraman S. Overviews of biological importance of quercetin: a bioactive flavonoid. Pharmacognosy Review 2016; 10(20), 84–89.
30. Li Y., Yao J., Han C., Yang J., Chaudhry M. T., Wang S., Liu H., Yin Y. Quercetin, inflammation and immunity. Nutrients 2016; 8(3), 167–181.
Štítky
Pharmacy Clinical pharmacologyČlánok vyšiel v časopise
Czech and Slovak Pharmacy
2019 Číslo 4
Najčítanejšie v tomto čísle
- New approach for detoxification of patients dependent on benzodiazepines and Z-drugs for reduction of psychogenic complications
- Plant α-amylase inhibitors and their effect on the utilization of polysaccharides contained in the diet
- Nephroprotective effect of N-acetylglucosamine in rats with acute kidney injury
- Study of biocompatibility of peritoneal dialysis solutions measured as in vitro cells viability